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Geles de electroforesis de acrilamida

Los geles de electroforesis de acrilamida están diseñados para la electroforesis de proteínas y ácidos nucleicos. Logre una separación óptima de sus proteínas objetivo con geles disponibles en varios tipos, densidades, tamaños, configuraciones de pocillos y formulaciones de tampones, adecuados tanto para aplicaciones PAGE nativas como desnaturalizantes.

DESTACADO

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Preguntas frecuentes

En la electroforesis en gel, el acrilamida se utiliza para formar un gel de poliacrilamida, que sirve como una matriz a través de la cual las moléculas como proteínas o ácidos nucleicos pueden separarse según su tamaño y carga. Aquí están los roles y funciones clave del acrilamida en la electroforesis en gel:

Formación del gel

El acrilamida, en combinación con un agente de reticulación (generalmente N,N'-metilenbisacrilamida), sufre una reacción de polimerización para formar un gel de poliacrilamida. Este gel consiste en una red de largas cadenas de polímero reticuladas entre sí, creando una estructura porosa.

Control del tamaño de los poros

La concentración de acrilamida y la proporción de acrilamida a bisacrilamida determinan el tamaño de los poros del gel. Las concentraciones más altas de acrilamida crean poros más pequeños, lo que proporciona una mayor resolución para la separación de moléculas más pequeñas. Por el contrario, las concentraciones más bajas crean poros más grandes, adecuados para la separación de moléculas más grandes. Las concentraciones típicas de acrilamida varían de 3-20%, con porcentajes más bajos utilizados para moléculas más grandes y porcentajes más altos para moléculas más pequeñas.

Resolución y separación

El gel de poliacrilamida actúa como un tamiz molecular. Las moléculas más pequeñas se mueven más fácilmente a través de los poros y, por lo tanto, migran más rápido, mientras que las moléculas más grandes se ven obstaculizadas y migran más lentamente. Esta migración dependiente del tamaño permite la separación de moléculas según su tamaño.

En la electroforesis de proteínas, como SDS-PAGE (Electroforesis en gel de poliacrilamida con dodecil sulfato de sodio), las proteínas se desnaturalizan y se recubren con SDS, lo que les da una carga negativa uniforme. El gel de poliacrilamida luego separa las proteínas principalmente por tamaño.

Estabilidad y versatilidad

Los geles de poliacrilamida son químicamente estables y pueden utilizarse para una variedad de técnicas electroforéticas, incluyendo PAGE nativa (donde las proteínas no se desnaturalizan) y PAGE desnaturalizante (como SDS-PAGE). Los geles pueden fundirse en varias espesuras y formatos, incluyendo geles de placa y geles de tubo, dependiendo de los requisitos experimentales.

La electroforesis en gel de agarosa y la electroforesis en gel de acrilamida son dos técnicas comunes utilizadas para separar moléculas, típicamente ácidos nucleicos y proteínas, basándose en su tamaño y carga. Las principales diferencias entre las dos son:

Composición del gel

La electroforesis en gel de agarosa utiliza agarosa, un polisacárido extraído de algas marinas. El gel se forma disolviendo polvo de agarosa en una solución tampón y permitiendo que se enfríe y solidifique. La electroforesis en gel de acrilamida utiliza poliacrilamida, formada por la polimerización de monómeros de acrilamida con un agente reticulante (generalmente bisacrilamida). El proceso de polimerización se inicia químicamente.

Tamaño de los poros

La agarosa tiene poros relativamente grandes, lo que la hace adecuada para separar moléculas más grandes, como fragmentos de ADN (típicamente de 100 pb a varios kb). La acrilamida tiene poros más pequeños y uniformes, que son adecuados para separar moléculas más pequeñas, como proteínas y pequeños ácidos nucleicos (típicamente de 5 pb a 1 kb).

Resolución

La agarosa proporciona una resolución más baja debido al tamaño más grande de los poros, ideal para separar grandes fragmentos de ADN, pero menos efectiva para fragmentos pequeños o proteínas. La acrilamida proporciona una resolución más alta debido al tamaño más pequeño de los poros, lo que la hace ideal para distinguir entre proteínas o pequeños fragmentos de ácidos nucleicos con pequeñas diferencias de tamaño.

Aplicaciones

La agarosa se usa comúnmente para la electroforesis de ADN y ARN, especialmente para análisis de rutina, como verificar el tamaño de los productos de PCR, digestiones de restricción y la integridad del ARN. La acrilamida se usa comúnmente para la electroforesis de proteínas (SDS-PAGE) y geles de secuenciación de ADN de alta resolución, así como para separar pequeños fragmentos de ácidos nucleicos.

Preparación y manipulación

La agarosa es más fácil y segura de preparar, ya que no implica productos químicos tóxicos. Simplemente disolver en tampón, calentar y verter en un molde. La acrilamida es más compleja y requiere una manipulación cuidadosa debido a la toxicidad de los monómeros de acrilamida. La polimerización debe controlarse cuidadosamente, generalmente con la adición de TEMED y persulfato de amonio.

Tampón de corrida

La agarosa a menudo utiliza tampón TAE (Tris-acetato-EDTA) o TBE (Tris-borato-EDTA). La acrilamida típicamente utiliza tampón Tris-Glicina-SDS para la electroforesis de proteínas (SDS-PAGE).

Al seleccionar geles de electroforesis de acrilamida, hay varios factores importantes a considerar para garantizar una separación y análisis óptimos de sus muestras. Aquí hay cinco consideraciones clave:

  1. Concentración de acrilamida: La concentración de acrilamida en el gel determina el tamaño de los poros, lo que afecta directamente la resolución y el rango de tamaños de moléculas que se pueden separar. Las concentraciones más bajas (por ejemplo, 5-8%) se utilizan para proteínas o ácidos nucleicos más grandes, mientras que las concentraciones más altas (por ejemplo, 10-20%) se utilizan para proteínas o ácidos nucleicos más pequeños. Los geles de gradiente, que tienen concentraciones variables de acrilamida, pueden usarse para separar una amplia gama de tamaños de moléculas en un solo gel.
  2. Tipo de gel (desnaturalizante vs. nativo): Los geles desnaturalizantes se utilizan para separar moléculas únicamente en función de su tamaño, con el uso de agentes desnaturalizantes como SDS (SDS-PAGE para proteínas) o urea (para ácidos nucleicos). Estos geles interrumpen las estructuras secundarias y terciarias, dando a las moléculas una relación uniforme de carga a masa. Los geles nativos se utilizan para separar moléculas en función de su conformación nativa, carga y tamaño. Estos geles no contienen agentes desnaturalizantes, preservando la estructura y función natural de las moléculas.
  3. Sistema de tampón: La elección del tampón puede influir en la resolución, las condiciones de corrida y los tipos de moléculas mejor separadas por el gel. Los sistemas de tampón comunes incluyen Tris-Glicina para SDS-PAGE y Tris-Borato-EDTA (TBE) o Tris-Acetato-EDTA (TAE) para ácidos nucleicos. Asegúrese de que el sistema de tampón sea compatible con el tipo de electroforesis que se está realizando y las moléculas que se están analizando.
  4. Grosor y formato del gel: El grosor del gel puede afectar la resolución y la cantidad de muestra que se puede cargar. Los geles más gruesos pueden acomodar volúmenes de muestra más grandes, pero pueden requerir tiempos de corrida más largos. El formato del gel (por ejemplo, geles de placa, geles de gradiente o geles de tubo) debe seleccionarse en función de la aplicación específica y el equipo disponible.
  5. Polimerización y preparación del gel: Considere el proceso de polimerización y la manipulación del acrilamida, que es un neurotoxina en su forma monomérica. Asegúrese de seguir los protocolos de seguridad adecuados durante la preparación del gel. Las condiciones de polimerización (por ejemplo, la concentración de TEMED y persulfato de amonio) deben optimizarse para producir una matriz de gel consistente y uniforme.

Al considerar estos factores, puede seleccionar los geles de electroforesis de acrilamida más adecuados para sus necesidades de investigación específicas, asegurando resultados confiables y reproducibles.

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